Preview

Тихоокеанский медицинский журнал

Расширенный поиск
Доступ открыт Открытый доступ  Доступ закрыт Только для подписчиков

Роль штаммов Acinetobacter baumannii в развитии гнойно-септических осложнений при ожоговой травме

https://doi.org/10.17238/PmJ1609-1175.2019.3.18–23

Полный текст:

Аннотация

Проанализированы данные литературы, касающиеся проблемы инфицирования и циркуляции штаммов Acinetobacter baumannii в госпитальных условиях, рассмотрены вопросы формирования резистентности к антибиотикам, обеспеченность факторами инвазии и «кворум-сенсинга», что позволяет им выдерживать значительные изменения внешних условий, такие как высушивание и обработку моющими средствами. Карбапенемы раньше использовались как препараты выбора для лечения инфекций, вызванных A. baumannii.
Однако повышение устойчивости бактерии к этому классу антибактериальных средств, обусловленное β-лактамазами классов B и D делает дальнейшую терапию карбапенемами бессмысленной. Оценена роль процессов образования биологических пленок штаммами A. baumannii, которые способствуют выживанию бактерии в организме человека, и таким образом, служат важным фактором вирулентности. Организация эффективного и динамичного инфекционного контроля в отделениях реанимации и интенсивной терапии считается важным направлением в комплексе мер по повышению качества и своевременности оказания медицинской помощи.

Об авторах

Т. Д. Фомичева
Тихоокеанский государственный медицинский университет
Россия

ассистент кафедры эпидемиологии и военной эпидемиологии 

690002, г. Владивосток, пр-т Острякова, 2



Ю. Е. Скурихина
Тихоокеанский государственный медицинский университет,
Россия

канд. мед. наук, доцент кафедры эпидемиологии и военной эпидемиологии 

690002, г. Владивосток, пр-т Острякова, 2



С. А. Сотниченко
Дальневосточный окружной медицинский центр ФМБА России
Россия

д-р мед. наук, руководитель Дальневосточного окружного медицинского центра 

690000, г. Владивосток, пр-т 100 лет Владивостоку, 161



П. А. Грибань
Дальневосточный окружной медицинский центр ФМБА России
Россия

врач-хирург ожогового отделения стационара 

690000, г. Владивосток, пр-т 100 лет Владивостоку, 161



В. В. Федорец
Тихоокеанский государственный медицинский университет,
Россия

клинический ординатор кафедры эпидемиологии и военной эпидемиологии 

690002, г. Владивосток, пр-т Острякова, 2



М. В. Тимошенко
Тихоокеанский государственный медицинский университет,
Россия

клинический ординатор кафедры эпидемиологии и военной эпидемиологии 

690002, г. Владивосток, пр-т Острякова, 2



Р. Р. Айвазян
Тихоокеанский государственный медицинский университет,
Россия

клинический ординатор кафедры эпидемиологии и военной эпидемиологии

690002, г. Владивосток, пр-т Острякова, 2



Список литературы

1. Атакишизаде С.А. Чувствительность внутрибольничных штаммов бактерий рода Acinetobacter к некоторым антибиотикам в многопрофильном стационаре г. Баку // Детские инфекции. 2018. № 3. С. 62–63.

2. Воробьева О.Н., Челышева Г.М., Дощицина А.С. [и др.]. Резистентность возбудителей ожоговой болезни к антибиотикам // Современные проблемы медицинской микробиологии. СПб., 2007. С. 165–167.

3. Гончаров А.Е. Эпидемиологические особенности гнойно-септических инфекций, вызванных Acinetobacter baumannii и Preudomonas aeruginosa в ожоговом реанимационном отделении: дис. … канд. мед. наук. СПб., 2005. 151 c.

4. Горбич Ю.Л., Карпов И.А. Значение адекватной эмпирической антибактериальной терапии при нозокомиальных инфекциях, вызванных Acinetobacter baumannii // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2012. Т. 14, № 1. С. 67–73.

5. Гординская Н.А. Сабирова Е.В., Абрамова Н.В. Карбапенемрезистентные грамотрицательные бактерии в структуре раневой ожоговой микрофлоры // Медицинский альманах. 2018. № 4. С. 34–37.

6. Жилина С.В., Миронов А.Ю., Поликарпова С.В. Ацинетобактерии при инфекциях кожи и мягких тканей // Курский научно-практический вестник «Человек и его здоровье». 2007. № 4. С. 45–56.

7. Зубков М.Н. Неферментирующие бактерии Acinetobacter spp.: таксономия и классификация, характеристика, клиническое значение, идентификация, антибиотикорезистентность // Инфекции и антимикробная терапия. 2003. № 2. С. 18–26.

8. Крылов К.М, Яфаев Р.Х., Демаков В.А. [и др.]. Генетическое разнообразие Acinetobacter baumannii в отделении ожоговой реанимации // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. 2006. № 2 . С. 25–30.

9. Присакарь В.И., Бердеу И.С., Спэтару Д.Ю. Результаты оценки микробной антибиотикорезистентности в условиях республики Молдова // Медицинский альманах. 2018. № 4. С. 31–34.

10. Сатосова Н.В. Эпидемиология и профилактика инфекций кровотока в отделении ожоговой реанимации и интенсивной терапии: дис. … канд. мед. наук. СПб., 2012. 144 с.

11. Сатосова Н.В., Крылов К.М., Зуева Л.П. [и др.]. Результаты эпидемиологического наблюдения за инфекциями кровотока в отделении реанимации и интенсивной терапии для пострадавших с тяжелой термической травмой // Вестник гематологии. 2010. Т. VI, № 1. С. 61.

12. Скурихина Ю.Е. Ибрагимова Т.Д., Скурихина Л.А. [и др.]. Молекулярно-эпидемиологический анализ штаммов Acinetobacter baumannii, выделенных у пациентов с ожоговой травмой // Современные технологии в медицине. 2016. Т. 8, № 1. С. 134–139.

13. Скурихина Ю.Е. Прушинский А.П., Завалина Д.Е. Распространенность гнойно-септических инфекций в отделениях детского многопрофильного стационара // Дальневосточный журнал инфекционной патологии. 2017. № 32. С. 58–67.

14. Скурихина Ю.Е., Туркутюков В.Б. Микробиологические особенности неферментирующих грамотрицательных бактерий и их влияние на развитие эпидемического процесса инфекций, связанных с оказанием медицинский помощи // Тихоокеанский медицинский журнал. 2016. № 3, прил. С. 111.

15. Тапальский Д.В., Бонда Н.А. Acinetobacter baumannii: распространенность, спектр и динамика антибиотикорезистентности, чувствительность к комбинациям антибиотиков // Журнал Гродненского государственного медицинского университета. 2018. Т. 16, № 3. С. 286–291.

16. Тарасов А.Е. Иммунологические аспекты ожоговой болезни в клинике и эксперименте: дис. … канд. мед. наук. Владивосток, 2009. 130 с.

17. Тец В.В., Заславская Н.В. Эффективность действия антибиотиков на бактерии в биопленках // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2005. № 5. С. 24–26.

18. Туркутюков В.Б., Ибрагимова Т.Д., Шмагунова Е.В. Этиология гнойно-септических осложнений при ожоговой травме и мониторинг чувствительности микроорганизмов к антибиотикам // Журн. микробиол., эпидемиол. и иммунобиол. 2014. № 2. С. 129.

19. Фомичева Т.Д., Туркутюков В.Б., Сотниченко С.А. [и др.]. Микробиологический мониторинг в системе эпидемиологического надзора за гнойно-септическими инфекциями при ожоговой травме // Тихоокеанский медицинский журнал, 2018. № 3. С. 72–74.

20. Шлык И.В., Сатосова Н.В., Крылов К.М. [и др.]. Эпидемиологический мониторинг в отделении ожоговой реанимации // Инфекции в хирургии. 2008. Т. 6, № 3. С. 23–27.

21. Acosta J., Merino M., Viedma E. Multidrug-resistant Acinetobacter baumanii harboring OXA-24 Carbapenemase, Spain // Emerg. Infect. Dis. 2011. Vol. 17, No. 6. P.1064–1067.

22. Al Atrouni A., Hamze, M., Jisr, T. [et al.]. Wide spread of OXA-23-producing carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii belonging to clonal complex II in different hospitals in Lebanon // Int. J. Infect. Dis. 2016. Vol. 52. P. 29–36.

23. Al-Agamy M.H., Jeannot K., El-Mahdy T.S. [et al.]. First detection of ges-5 carbapenemase-producing Acinetobacter baumannii isolate // Microb. Drug Resist. 2016. doi: 10.1089/mdr.2016.0152

24. Aly M.M., Abu Alsoud N.M., Elrobh M.S. [et al.]. High prevalence of the PER-1 gene among carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii in Riyadh, Saudi Arabia // Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2016. Vol. 35. P. 1759–1766.

25. Babik J., Bodnarova L., Sopko K. [et al.]. Acinetobacter – serious danger for burn patients // Acta Chir. Plast. 2008. Vol. 50, No. 1. P. 27–32.

26. Bahador A., Farshadzadeh Z., Raoofian R. [et al.]. Association of virulence gene expression with colistin-resistance in Acinetobacter baumannii: Analysis of genotype, antimicrobial susceptibility, and biofilm formation // Annals of Clinical Microbiology and Antimicrobials. 2018. Vol. 17, No. 1. P. 24.

27. Bassetti M., Righi E., Esposito S. [et al.]. Drug treatment for multidrug-resistant Acinetobacter baumannii infections // Future Microbiol. 2008. Vol. 3, No. 6. P. 649–660.

28. Brahmi N., Biel Y., Kouraichi A. [et al.]. Evoluotion of resistance in Acinetobacter baumannii in Tunisian ICU after antibiotic therapy restriction // Crit. Сare. 2005. Vol. 9, Suppl. 1. P. 19.

29. Carvalho K.R., D’Alincourt A., Carvalho-Assef A.P. [et al.]. Occurrence of blaOXA-23 gene in imipenem-susceptible Acinetobacter baumannii // Mem. Inst. Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro. 2011. Vol. 106, No. 4. P. 505–506.

30. Chang-Ro Lee, Jung Hun Lee, Moonhee Park [et al.]. Biology of Acinetobacter baumannii: Pathogenesis, antibiotic resistance mechanisms, and prospective treatment options // Front. Cell. Infect. Microbiol. 2017. Vol. 7. Art. 55.

31. Chihi, H., Bonnin, R. A., Bourouis, A. [et al.]. GES-11-producing Acinetobacter baumannii clinical isolates from Tunisian hospitals: Long-term dissemination of GES-type carbapenemases in North Africa // J. Glob. Antimicrob. Resist. 2016. Vol. 5. P. 47–50.

32. Church D., Elsayed S., Reid O. [et al.]. Burn wound infections // Clin. Microbiol. Rev. 2006. Vol. 19, No. 2. P. 403–434.

33. Cobrado L., Pinto Silva A., Pina-Vaz C. [et al.]. Effective disinfection of a burn unit after two cases of sepsis caused by multi-drugresistant Acinetobacter baumannii // Surg. Infect. 2018. Vol. 19, No. 5. P. 541–543.

34. Fluit, A. C., Maarten R., Visser A. [et al.]. Molecular detectionon of antimicrobial resistance // Clin. Microbiol. Rev. 2001. Vol. 14, No. 4. P. 836–871.

35. Frikh M., Abdelhay L., Jalal K. [et al.]. Profile and antibiotic susceptibility of bacteria isolates in burn patients hospitalized in a Moroccan hospital: A cross- sectional study // Wounds: A Compendium of Clinical Research and Practice. 2018. Vol. 30, No. 4. P. 102–107.

36. Gaddy J. Actis L. Regulation of Acinetobacter baumannii biofilm formation // Future Microbiol. 2009. Vol. 4. P. 273–278.

37. Mitchell J., Schwaber M., Cosgrove S. [et al.]. Fluoroquinolones protective against cephalosporin resistance in gram-negative nosocomial pathogens // Emerg. Infect. Dis. 2004. Vol. 10, No. 1. P. 94–98.

38. Mugnier P.D., Poirel L., Naas T. [et al.]. Worldwide dissemination of the blaOXA-23 carbapenemase gene of Acinetobacter baumannii // Emerg. Infect. Dis. 2010. Vol. 16, No. 1. P. 35–40.

39. Munier A., Biardb L., Legrandc M. [et al.]. Incidence, risk factors and outcome of multi-drug resistant Acinetobacter baumannii nosocomial infections during an outbreak in a burn unit // Int. J. Infect. Dis. 2019. Vol. 79. P. 179–184.

40. Mussi M.A., Gaddy J.A., Cabruja M. [et al]. The opportunistic human pathogen Acinetobacter baumannii senses and responds to light // J. Bacteriol. 2010. Vol. 192, No. 24. P. 6336–6345.

41. Nemec A., Krizova L., Maixnerova M. [et al]. Genotypic and phenotypic characterization of the Acinetobacter calcoaceticus – Acinetobacter baumannii complex with the proposal of Acinetobacter pittii sp. nov. (formerly Acinetobacter genomic species 3) and Acinetobacter nosocomialis sp. nov. (formerly Acinetobacter genomic species 13TU) // Res. Microbiol. 2011. Vol. 162, No. 4. P. 393–404.

42. Nishio H., Komatsu M., Shibata N. [et al.]. Metallo-β-lactamaseproducing gram-negative bacilli: Laboratory-based surveillance in cooperation with 13 clinical laboratories in the Kinki region of Japan // J. Clinic. Microbiol. 2004. Vol. 42, No. 11. P. 5256–5263.

43. Seward R.J. Detection of integrons in worldwide nosocomial isolates of Acinetobacter spp. // Clin. Microbiol. Infect. 1999. Vol. 5, No. 6. P. 308–318.

44. Shaykh Baygloo N., Bouzari M., Rahimi F. [et al.]. Identification of genomic species of Acinetobacter isolated from burns of ICU patients // Arch. Iran Med. 2015. Vol. 18, No. 10. P. 638–642.

45. Tekin R., Dal T., Bozkurt F. [et al]. Risk factors for nosocomial burn wound infection caused by multidrug resistant Acinetobacter baumannii // J. Burn. Care Res. 2014. Vol. 35, No. 1. P. 73–80.

46. Tomaras A., Dorsey C., Edelmann R. [et al.]. Attachment to and biofilm formation on abiotic surfaces by Acinetobacter baumannii: Involvement of a novel chaperone-usher pili assembly system // Microbiology. 2003. Vol. 149. P. 3473–3484.

47. Van Looveren M., Goosens H. Antimicrobial resistance of Acinetobacter spp. in Europe // Clin. Microbiol. Infect. 2004. Vol. 10. P. 684–704.


Для цитирования:


Фомичева Т.Д., Скурихина Ю.Е., Сотниченко С.А., Грибань П.А., Федорец В.В., Тимошенко М.В., Айвазян Р.Р. Роль штаммов Acinetobacter baumannii в развитии гнойно-септических осложнений при ожоговой травме. Тихоокеанский медицинский журнал. 2019;(3):18-23. https://doi.org/10.17238/PmJ1609-1175.2019.3.18–23

For citation:


Fomicheva T.D., Skurikhina Y.E., Sotnichenko S.A., Griban P.A., Fedorets V.V., Tymoshenko M.V., Ayvazian R.R. THE ROLE OF ACINETOBACTER BAUMANNII STRAINS IN THE DEVELOPMENT OF SEPTIC COMPLICATIONS IN CASE OF BURN INJURY. Pacific Medical Journal. 2019;(3):18-23. (In Russ.) https://doi.org/10.17238/PmJ1609-1175.2019.3.18–23

Просмотров: 13


ISSN 1609-1175 (Print)