Структурная организация кровеносной системы матки
https://doi.org/10.17238/PmJ1609-1175.2018.3.13-23
Аннотация
В обзоре анализируются данные литературы и собственные материалы авторов по организации микроциркуляторного русла матки и его регуляции. Обосновывается гипотеза, согласно которой приспособление микроциркуляторной системы матки к меняющимся условиям функционирования органа обеспечивается регуляторными механизмами, действующими опосредованно, путем изменения просвета приносящих и выносящих сосудов, или непосредственно через структурные элементы стенки сосудов, преимущественно эндотелий. Обсуждается роль в этом процессе газотрансмиттеров: оксида азота, монооксида углерода, сероводорода.
Об авторах
И. А. Храмова
Тихоокеанский государственный медицинский университет
Россия
Россия
В. М. Черток
Тихоокеанский государственный медицинский университет
Россия
Россия
А. Е. Коцюба
Тихоокеанский государственный медицинский университет
Россия
Россия
А. Г. Черток
Тихоокеанский государственный медицинский университет
Россия
Россия
Список литературы
1. Афанасьев А.А., Черток В.М. Использование автоматизированной системы анализа изображений ALLEGRO-MC для количественной биомикроскопии микроциркуляторного русла // Тихоокеанский медицинский журнал. 2004. № 2. С. 82-86.
2. Гецова В.М. Проницаемость барьеров матки и плаценты для серотонина и флуоресцина натрия: автореф. дис.. д-ра биол. наук. М., 1972. 19 с.
3. Гусакова С.В., Ковалев И.В., Смаглий Л.В. [и др.]. Газовая сигнализация в клетках млекопитающих // Успехи физиологических наук. 2015. Т. 46, № 4. С. 53-73.
4. Козлов В.И. Капилляроскопия в клинической практике. М.: Практическая медицина, 2015. 232 с.
5. Коков Л.С., Ситкин И.И., Самойлова Т.Е. Артериальное кровоснабжение матки и ее придатков в норме, в различные возрастные периоды и при патологических состояниях применительно к эндоваскулярной окклюзии маточной артерии // Гинекология. 2004.Т. 6, № 5. С. 259-262.
6. Коцюба А.Е., Черток В.М., Черток А.Г. Возрастные особенности СО-опосредованной реакции пиальных артерий разного диаметра у крыс // Бюл. эксперим. биологии и медицины // 2016. Т. 162, № 11. С. 612-617.
7. Коцюба А.Е., Черток В.М., Бабич Е.В., Коцюба Е.П. Особенности цитохимии тучных клеток в некоторых органах крысы // Цитология. 2008. Т. 50, № 12. С. 1023-1029.
8. Куприянов В.В., Банин В.В., Алимов Г.А. Организация и транспортные свойства эндотелия микрососудов // Вестник АМН СССР. 1988. № 2. С. 4-9.
9. Мотавкин П.А., Ломакин А.В., Черток В.М. Капилляры головного мозга. Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1983. 140 с.
10. Недобыльская Ю.П. Гистохимия АТФаз капиллярного русла матки крыс при комбинированном действии лазерного излучения и женских половых гормонов: дис. канд. мед. наук. Владивосток. 1994. 183 с.
11. Немков Ю.К. Функциональная морфология капиллярного русла матки крыс при воздействии источников излучения оптического диапазона: дис.. канд. мед. наук. Владивосток. 1991. 212 с.
12. Немков Ю.К., Черток А.Г., Черток В.М. Изменения капиллярного русла эндометрия матки крыс в течение эстрального цикла (гистохимическое исследование) // Морфология. 1992. Т. 102. № 4. С. 56-59.
13. Орлов В.И., Овсянников В.Г. Микроциркуляция в серозном покрове матки у интактных крыс // Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 1984. № 2. С. 66-67.
14. Ракицкая В.В., Проймина Ф.И., Чудинов Ю.В. Адренергическая иннервация матки крысы в разные фазы эстрального цикла // Физиологический журнал СССР им. И.М. Сеченова. 1986. Т. 72, № 7. С. 987-991.
15. Реутов В.П., Черток В.М. Новые представления о роли вегетативной нервной системы и систем генерации оксида азота в сосудах мозга // Тихоокеан. мед. журн. 2016. № 2. С. 10-19.
16. Реутов В.П., Сорокина Е.Г., Косицын Н.С. Проблемы оксида азота и цикличности в биологии и медицине // Успехи современной биологии. 2005. Т. 125, № 1. С. 41-65.
17. Черток А.Г., Немков Ю.К., Черток В.М. Функциональная морфология капиллярного русла матки после введения синестрола // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1990. Т. 108, № 6. С. 605-607.20.
18. Черток В.М. Тучные клетки наружной оболочки артерий основания головного мозга // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1980. Т. 79, № 11. С. 72-79.
19. Черток В.М. Гистохимическая характеристика транспортной АТФ-азы в капиллярах мозга человека // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1984. Т. 97, № 3. С. 375-377
20. Черток В.М. Возрастные изменения капилляров головного мозга человека (гистохимическое исследование) // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1985. Т. 88, № 2. С. 28-34
21. Черток В.М., Зенкина В.Г. Регуляция функций яичников: участие газовых трансмиттеров NO, СО и H2S // Успехи физиологических наук. 2015. Т. 46, № 4. С. 74-89.
22. Черток В.М., Коцюба А.Е. Структурная организация бульбарного отдела сердечно-сосудистого центра. Владивосток: Медицина ДВ, 2013. 164 с.
23. Черток В.М., Коцюба А.Е. Возрастные особенности вазомоторной регуляции артерий мягкой оболочки мозга у крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2010. Т. 149, № 3. С. 340-344.
24. Черток В.М., Коцюба А.Е. Особенности распределения ферментов синтеза H2S в стенке церебральных артерий у крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2012. Т. 154, № 7. С. 116-120.
25. Черток В.М., Коцюба А.Е. Нейрохимическая организация внутриядерных нейронов продолговатого мозга у нормо- и гипертензивных крыс // Нейрохимия. 2016. Т. 33, № 3. С. 244-252.
26. Черток В.М., Черток А.Г. Регуляторный потенциал капилляров мозга // Тихоокеанский мед. журнал. 2016. № 2. С. 72-80.
27. Черток В.М., Зенкина В.Г., Каргалова Е.П. Функциональная морфология яичника. Владивосток: Медицина ДВ, 2015. 154 с.
28. Черток В.М., Коцюба А.Е., Коцюба Е.П. Гемоксигеназа-2 в нейронах головного и спинного мозга человека // Вестник РАМН. 2012. № 6. С. 36-41.
29. Черток В.М., Коцюба А.Е., Черток А.Г. Распределение гемоксигеназ в стенке артерий мягкой оболочки мозга крыс // Морфология. 2017. Т. 151, № 1. С. 33-38.
30. Черток В.М., Невзорова В.А., Захарчук Н.В. Сравнительное изучение HIF-1A- и HIF-2A-иммунопозитивных нейронов и капилляров в коре головного мозга крыс при тканевой гипоксии // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2018. Т. 165, № 4. С. 513-517.
31. Черток В.М., Старцева М.С., Коцюба А.Е. Применение пиксельного метода в количественной оценке результатов гистохимических исследований // Морфология. 2012. Т. 142. № 5. С. 71-75.
32. Черток В.М., Черток А.Г., Зенкина В.Г. Эндотелиозависимая регуляция ангиогенеза // Цитология. 2017. Т. 59, № 4. С. 243-258.
33. Черток В.М., Коцюба А.Е., Старцева М.С., Коцюба Е.П. Два пула интернейронов в бульбарном отделе сердечно-сосудистого центра крыс // Доклады Академии наук. 2015. Т. 463, № 5. С. 619-623.
34. Черток В.М., Недобыльская Ю.П., Немков Ю.К., Шакунов С.А. Влияние лазерного излучения на фоне фолликулина на капилляры матки крыс // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 1997. Т. 123, № 6. С. 718-720.
35. Ширинский В.П. Молекулярная физиология эндотелия и механизмы проницаемости сосудов // Успехи физиологических наук. 2011. Т. 42, № 1. С. 18-32.
36. Ablove T.S., Austin J.L., Phernetton T.M., Magness R.R. Effects of endogenous ovarian estrogen versus exogenous estrogen replacement on blood flow and ERßa and ERß levels in the bladder // Reprod. Sci. 2009. Vol. 16, No. 7. Р 657-664.
37. Acevedo C.H., Ahmed A. Hemeoxygenase-1 inhibits human myometrial contractility via carbon monoxide and is upregulated by progesterone during pregnancy // J. Clin. Invest. 1998. Vol. 101. Р 949-955.
38. Alexandreanu I.C., Lawson D.M. Effects of chronic administration of a heme oxygenase substrate or inhibitor on progression of the estrous cycle, pregnancy and lactation of Sprague-Dawley rats // Life Sci. 2002. Vol. 29, No. 2. P.153-162.
39. Ali M.Y., Ping C.Y., Mok Y.Y. [et al.]. Regulation ofvascular nitric oxide in vitro and in vivo; a new role for endogenous hydrogen sulphide? // Br. J. Pharmacol. 2006. Vol. 149. P. 625-634.
40. Barber A., Robson S.C., Lyall F. Hemoxygenase and nitric oxide synthase do not maintain human uterine quiescence during pregnancy // Am. J. Pathol. 1999. Vol. 155, No. 3. Р 831-840.
41. Bertler A., Falck B., Rosengren J. The direct demonstration of a barrier mechanism in the brain capillaries // Acta Pharmacol. Toxikol. 1966. Vol. 20. P 317-321.
42. Boehning D., Snyder S.H. Novel neural modulators // Ann. Rev. Neurosci. 2003. Vol. 26. P. 105-131.
43. Byers M.J., Zangl A., Phernetton T.M. [et al.]. Endothelial vasodilator production by ovine uterine and systemic arteries: ovarian steroid and pregnancy control of ERalpha and ERbeta levels // J. Physiol. 2005. Vol. 565 (Pt1). Р 85-99.
44. Carter T.D., Ogden D. Acetylcholine-stimulated changes of membrane potential and intracellular Ca2+ concentration recorded in endothelial cells in situ in the isolated rat aorta // Pflugers Arch. 1994. Vol. 428. P. 476-484.
45. Cicinelli E., Einer-Jensen N., Galantino P [et al.]. The vascular cast of the human uterus: from anatomy to physiology // Ann. NY Acad. Sci. 2004. Vol. 1034. Р 19-26.
46. D'Emmanuele di Villa Bianca R., Fusco F., Mirone V. [et al.]. The role of the hydrogen sulfide pathway in male and female urogenital system in health and disease // Antioxid. Redox Signal. 2017. Vol. 27, No. 10. Р 654-668.
47. Freedman J.E., Loscalzo J. Nitric oxide and its relationship to thrombotic disorders // J. Thromb. Haemost. 2003. Vol. 1, No. 6. Р. 1183-1188.
48. Garris D.R. Uterine blood flow, pH, and pCO2 during nidation in the guinea pig: ovarian regulation // Endocrinology. 1984. Vol. 114, No. 4. Р. 1219-1224.
49. Garris D.R., McConnaughey M.M., Dar M.S. Estrogen modulation of uterine adrenergic-cholinergic interaction: effects on vasoactivity and adrenergic receptors in the guinea pig // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1986. Vol. 239, No. 1. Р 270-278.
50. Guzman M.A., Navarro M.A., Carnicer R. [et al.]. Cystathionine ß-synthase is essential for female reproductive function // Human Molecular Genetics. 2006. Vol. 15. P. 3168-3176.
51. Harvey C.A., Owen D.A. Changes in uterine and ovarian blood flow during the oestrous cycle in rats // J. Endocrinol. 1976. Vol. 71, No. 3. Р 367-369.
52. Herrnberger L., Ebner K., Junglas B. [et al.]. The role of plasmalemma vesicle-associated protein (PLVAP) in endothelial cells of Schlemm's canal and ocular capillaries // Exp. Eye Res. 2012. Vol. 105. Р 27-33.
53. Kardon R.H., Farley D.B., Heidger PM. [et al.]. Intraarterial cushions of the rat uterine artery: a scanning electron microscope evaluation utilizing vascular casts // Anat. Rec. 1982. Vol. 203, No. 1. Р 19-29.
54. Kisu I., Mihara M., Banno K. [et al.]. A new surgical technique of uterine auto-transplantation in cynomolgus monkey: preliminary report about two cases // Arch. Gynecol. Obstet. 2012. Vol. 285. Р 135-140.
55. Krzymowski T., Stefanczyk-Krzymowska S. The role of the endometrium in endocrine regulation of the animal oestrous cycle // Reprod. Domest. Anim. 2008. Vol. 43, No. 1. Р 80-91.
56. Kukoba T.V., Pivovar S.M., Moibenko A.A. Participation of carbon monooxide system in regulation of coronary vessels tone // Clin. Experim. Pathol. 2006. Vol. 5, No. 4. P. 46-49.
57. Lechuga T.J., Zhang H.H., Sheibani L. [et al.]. Estrogen replacement therapy in ovariectomized nonpregnant ewes stimulates uterine artery hydrogen sulfide biosynthesis by selectively up-regulating Cystathionine ß-Synthase expression // Endocrinology. 2015. Vol. 156, No. 6. P. 2288-2298.
58. Magness R.R., Shaw C.E., Phernetton T.M. [et al.]. Endothelial vasodilator production by uterine and systemic arteries, II: pregnancy effects on NO synthase expression // Am. J. Physiol. 1997. Vol. 272. P. H1730-H1740.
59. Marazioti A., Bucci M., Ciro C. [et al.]. Inhibition of nitric oxide-stimulated vasorelaxation by carbon monoxide-releasing molecules // Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2011. Vol. 31. P. 2570-2576.
60. Marshall S.A., Senadheera S.N., Jelinic M. [et al.]. Relaxin Deficiency leads to uterine artery dysfunction during pregnancy in mice // Front. Physiol. 2018. Vol. 22, No. 9. P 255-267.
61. Mayra PR., Rosalina V.L., Lopez G. [et al.] Regulation of uterine blood flow. I. Functions of estrogen and estrogen receptor a/ß in the uterine vascular endothelium during pregnancy // Rev. Chil. Obstet. Ginecol. 2014. Vol. 79, No. 2. Р 129-139.
62. Mehta D., Malik A.B. Signaling mechanisms regulating endothelial permeability // Physiol. Rev. 2006. Vol. 86, No. 1 P. 279-367.
63. Mitidieri E., Tramontano T., Donnarumma E. [et al.]. l-Cys/CSE/ H2S pathway modulates mouse uterus motility and sildenafil effect // Pharmacol Res. 2016. Vol. 111. Р 283-289.
64. Morris A.W., Sharp M.M., Albargothy N.J. Vascular basement membranes as pathways for the passage of fluid into and out of the brain // Acta Neuropathol. 2016. Vol. 131, No. 5. Р 725-736.
65. Nagpure B.V, Bian J.S. Interaction ofhydrogen sulfide with nitric oxide in the cardiovascular system // Oxid Med. Cell Longev. 2016. Vol. 2016. Article ID: 6904327.
66. Nelson Sh.H., Steinsland O.S., Wang Yu. [et al.]. Increased nitric oxide synthase activity and expression in the human uterine artery during pregnancy // Circ. Res. 2000. Vol. 87. Р 406-411.
67. Nëmecek D., Dvorakova M., Sedmikova M. Heme oxygenase/ carbon monoxide in the female reproductive system: an overlooked signalling pathway // Int. J. Biochem. Mol. Biol. 2017. Vol. 8, No. 1. P. 1-12.
68. Ogawa K.S., Fujimotok K., Ogawa K. Ultracytochemical studies of adenosine nucleotides in aortk endothelial and smooth muscle cells - Ca2+-ATPase and Na+, K+-ATFase // Acta Histochem. Cytochem. 1986. Vol. 19. Р 601-612.
69. Pastore M.B., Talwar S., Conley M.R. [et al.]. Identification of differential ER-alpha versus ER-beta mediated activation of eNOS in ovine uterine artery endothelial cells // Biol. Reprod. 2016. Vol. 94, No. 6. Р 139.
70. Sheibani L., Lechuga T.J., Zhang H. [et al.]. Augmented H2S production via cystathionine-beta-synthase upregulation plays a role in pregnancy-associated uterine vasodilation / Biol. Reprod. 2017. Vol. 96, No. 3. P 664-672.
71. Song Y., Fukuda N., Bai C. [et al.]. Role of aquaporins in alveolar fluid clearance in neonatal and adult lung, and in oedema formation following acute lung injury: studies in transgenic aquaporin null mice // J. Physiol. 2000. Vol. 525, No. 3. P. 771-779.
72. Stahl W.L., Baskin D.G. Histochemistry of ATPases // J. Histochem. Cytochem. 1990. Vol. 38, No. 8. Р 1099-1122.
73. Theoharides T.C., Stewart J.M. Genitourinary mast cells and survival // Trans. Androl. Urol. 2015. Vol. 4, No. 5. Р 579-586.
74. Toda N., Ayajiki K., Okamura T. Cerebral blood flow regulation by nitric oxide: recent advances // Pharmacol. Rev. 2009. Vol. 61, Ш. 1. Р 62-97.
75. Toda N., Okamura T. Modulation of renal blood flow and vascular tone by neuronal nitric oxide synthase-derived nitric oxide // J. Vasc. Res. 2011. Vol. 48, Ш. 1. Р 1-10.
76. Tropea T., De Francesco E.M., Rigiracciolo D. [et al.]. Pregnancy Augments G Protein Estrogen Receptor (GPER) Induced Vasodilation in Rat Uterine Arteries via the Nitric Oxide - cGMP Signaling Pathway // PLoS One. 2015. Vol. 10, No. 11. Р e0141997.
77. Väisänen-Tommiska M., Butzow R., Ylikorkala O., Mikkola T.S. Mifepristone-induced nitric oxide release and expression of nitric oxide synthases in the human cervix during early pregnancy // Hum. Reprod. 2006. Vol. 21, No. 8. Р 2180-2184.
78. Wang H., Wang A.X., Aylor K. [et al.]. Nitric oxide directly promotes vascular endothelial insulin transport // Diabetes. 2013. Vol. 62, No. 12. P 4030-4042.
79. Woidacki K., Jensen F., Zenclussen A.C. Mast cells as novel mediators of reproductive processes // Front. Immunol. 2013. Vol. 4. Р. 29-36.
80. Yang G., Wu B. Jiang L. [et al.]. H2S as a physiologic vasorelaxant: hypertension in mice with deletion of cystathionine -lyase // Science. 2008. Vol. 322. Р. 587-590.
81. Zenclussen M.L., Casalis P.A., Jensen F. [et al.]. Hormonal fluctuations during the estrous cycle modulate heme oxygenase-1 expression in the uterus // Front. Endocrinol. 2014. Vol. 5. P 32.
82. Zhang H.H., Chen J.C., Sheibani L. [et al.]. Pregnancy augments VEGF-stimulated in vitro angiogenesis and vasodilator (NO and H2S) production in human uterine artery endothelial cells // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2017. Vol. 102, No. 7. P. 2382-2393.
Рецензия
Для цитирования:
Храмова И.А., Черток В.М., Коцюба А.Е., Черток А.Г. Структурная организация кровеносной системы матки. Тихоокеанский медицинский журнал. 2018;(3):13-23. https://doi.org/10.17238/PmJ1609-1175.2018.3.13-23
For citation:
Khramova I.A., Chertok V.M., Kotsyuba A.E., Chertok A.G. STRUCTURAL ORGANIZATION OF THE UTERUS CIRCULATORY SYSTEM. Pacific Medical Journal. 2018;(3):13-23. (In Russ.) https://doi.org/10.17238/PmJ1609-1175.2018.3.13-23
Просмотров: 275
Послать статью по эл. почте 