Способность к биопленкообразованию у возбудителей инфекций, выделенных от пациентов крупного многопрофильного детского стационара

Цель: анализ образования биопленок у микроорганизмов, выделенных от пациентов детского стационара с тяжелыми гнойно-септическими заболеваниями. Материал и методы. Способность к биопленкообразованию изучали у микроорганизмов, выделенных от 32 пациентов 1–15 лет с сепсисом, острым гематогенным остеомиелитом, перитонитом и пневмонией, в  отделении реанимации и  интенсивной терапии детского многопрофильного стационара регионального уровня. Материалом для исследования служили кровь, мокрота, смывы с трахеобронхиального дерева, зева, раневое отделяемое, жидкость брюшной полости. Результаты. Способностью к  биопленкообразованию обладали все исследованные штаммы, при этом большая их часть формировала умеренно выраженные биопленки. Заключение. Повсеместное распространение биопленочных инфекций можно отнести к важнейшим факторам сохранения и распространения микроорганизмов в медицинских учреждениях, которые существенно ограничивают профилактические и лечебные мероприятия.

микроорганизмы, биопленки, гнойно-септические инфекции, отделение реанимации и интенсивной терапии

1. Ковалишена О.В., Благонравова А.С., Воробьева О.Н., Ермольева С.А., Послова Л.Ю., Шпрыкова О.Н. Актуальные вопросы эпидемиологического надзора за госпитальными инфекциями. Ремедиум Приволжье. 2008;1:49–51.

2. Национальная концепция профилактики инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, 2011. URL: http://www.garant.ru/products/ipo/prime/doc/70000121/ (Accessed Apr 24, 2019).

3. Анганова Е.В., Савилов Е.Д., Ушкарева О.А., Аблов А.М., Духанина А.В. Способность патогенных и условно-патогенных энтеробактерий к формированию биопленок. Acta Biomedica Scientifica. 2014;5:34–7.

4. Ярец Ю.И, Шевченко Н.И. Новый метод анализа бактериальной биопленки. Наука и инновации. 2016;10:64–68.

5. Christensen GD, Simpson WA, Younger JJ, Baddour LM, Barrett FF, Melton DM, Beachey EH. Adherence of coagulase-negative staphylococci to plastic tissue culture plates: a quantitative model for the adherence of Staphylococci to medical devices. J Clin Microbiol. 1985;22(6):996–1006.

6. Гостев В.В., Сидоренко С.В. Бактериальные биопленки и инфекции. Журнал инфектологии. 2010;3(2):4–15.

7. Kirov SM, Webb JS, O’May CY, Reid DW, Woo JK, Rice SA, Kjelleberg S. Biofilm differentiation and dispersal in mucoid Pseudomonas aeruginosa isolates from patients with cystic fibrosis. Microbiology. 2007; 153:3264–74.

8. Eze EC, Chenia HY, El Zowalaty ME. Acinetobacter baumannii biofilms: Effects of physicochemical factors, virulence, antibiotic resistance determinants, gene regulation, and future antimicrobial treatments. Infection and Drug Resistance. 2018; 11:2277–99.

9. Gupta TT, Karki SB, Matson JS, Gehling DJ, Ayan H. Sterilization of biofilm on a titanium surface using a combination of nonthermal plasma and chlorhexidine digluconate. BioMed Research International. 2017; doi: 10.1155/2017/6085741

10. Yu W, Hallinen KM, Wood KB. Interplay between antibiotic efficacy and drug-induced lysis underlies enhanced biofilm formation at subinhibitory drug concentrations. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 2018;62(1):16–7.

11. Johani K, Abualsaud D, Costa DM, Hu H, Whiteeley G, Deva A, Vickery K. Characterization of microbial community composition, antimicrobial resistance and biofilm on intensive care surfaces. J Infect Public Health. 2018;11(3):418–24.

12. Kamaruzzaman N, Tan LP, Mat Yazid KA, Saeed SI, Hamdan RH, Choong SS, et al.. Targeting the bacterial protective armour; Challenges and novel strategies in the treatment of microbial biofilm. Materials (Basel). 2018;11(9); doi: 10.3390ma11091705

13. Mohamed SH, Salem D, Azmy M, Fam NS. Antibacterial and antibiofilm activity of cinnamaldehyde against carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii in Egypt: In vitro study. J App Pharm Sci. 2018;8(11):151–6.